Чтение онлайн

Исследование мокроты

Обычно собирают утреннюю порцию мокроты до приема пищи (в 8–9 ч утра), полученную путем откашливания. Следует избегать попадания в образец слюны и секрета носоглотки или синусов. Мокроту собирают в чистую сухую широкогорлую склянку.

Предварительно больной должен прополоскать рот и глотку кипяченой водой и вычистить зубы. Если мокрота спонтанно не отделяется, можно применить ингаляцию смеси растворов хлорида натрия (15 %) и пропиленгликоля (20 %), предварительно подогретой до 37 °C. После ингаляции в течение 20 мин больной обычно откашливает мокроту.

Желательно доставить в лабораторию и исследовать свежевыделенную мокроту как можно скорее, хотя для некоторых исследований (например, исследование на микобактерии туберкулеза) отсрочка не приносит большого вреда.

При невозможности немедленного исследования мокроту необходимо хранить в прохладном месте, лучше – в холодильнике. Нецелесообразно собирать мокроту за большой промежуток времени (более суток), так как длительное стояние приводит к размножению бактерий и аутолизу элементов мокроты.

Исследование желудочного содержимого

Взятие желудочного содержимого проводит медицинская сестра в 8–9 ч утра.

Накануне и в день зондирования пациент не должен курить. Отменяются все медикаменты за 24 ч до зондирования. Зондирование проводится натощак после 14-часового голодания. Перед зондированием необходимо вынуть съемные зубные протезы.

Различают два способа зондирования: одномоментный и фракционный. Одномоментное зондирование проводится при помощи толстого зонда (резиновая трубка длиной 80 см, с внутренним просветом 8 мм, с двумя отверстиями на закругленном конце). В настоящее время этот метод почти не применяется. Зондирование толстым зондом может применяться как лечебная процедура при промывании желудка. С диагностической целью зондирование желудка проводят фракционным способом с помощью тонкого зонда, представляющего собой тонкую резиновую трубку длиной 110–150 см, с диаметром просвета 2–3 мм, с закругленным желудочным концом (без оливы) с двумя отверстиями на нем. Зонд имеет 2 метки: на расстоянии 50 и 70 см от конца. Введение тонкого зонда производится при активном участии пациента. Зонд вводят обычно в положении больного сидя, конец зонда помещают в глубине глотки на корень языка, при этом больной должен глубоко дышать и неторопливо глотать. Больной не должен запрокидывать голову, а стараться наклонять ее кпереди. У лиц с повышенным рвотным рефлексом зонд может быть введен через нос или после анестезии корня языка и зева раствором новокаина.

Введение зонда до первой метки свидетельствует о нахождении конца его в области дна желудка, а продвижение до второй метки – о нахождении в области привратника желудка. Проконтролировать положение зонда можно рентгенологически. Для ориентировочного расчета можно пользоваться рекомендацией: вводить зонд на глубину, равную росту больного в сантиметрах минус 100.

На наружный конец зонда надевают шприц, через который отсасывают все содержимое желудка (порция натощак). Надо стремиться, чтобы время от начала введения зонда до извлечения порции «натощак» не превышало 5 мин. Затем в течение 1 ч отсасывают содержимое желудка каждые 15 мин (базальный секрет). Аспирацию производят по 5 мин с 10-минутными интервалами. Затем применяют стимулятор желудочной секреции и собирают желудочный сок, выделяющийся на фоне активной стимуляции. В качестве стимуляторов применяют энтеральные и парентеральные раздражители.

Из энтеральных раздражителей наиболее физиологичным является капустный сок или 7 %-ный отвар сухой капусты.

После аспирации порции натощак и четырех 15-минутных порций базальной секреции в желудок через зонд при помощи воронки вводят 200 мл отвара капусты, подогретого до 37 °C, через 10 мин извлекают 10 мл содержимого (контрольная порция) и еще через 15 мин – все содержимое желудка (остаток пробного завтрака), затем в течение 1 ч каждые 15 мин аспирируют чистый желудочный сок.

В качестве парентеральных раздражителей используют гистамин. После аспирации порции «натощак» и четырех базальных порций, собранных в течение 1 ч с 15-минутными интервалами, пациенту подкожно вводят гистамин в дозе: для фосфорнокислого гистамина 0,01 мг/кг веса тела, для дигидрохлорида гистамина – 0,008 мг/кг веса тела. Затем в течение 1 ч продолжают аспирировать содержимое желудка каждые 15 мин (4 порции).

Все порции желудочного содержимого (9 порций: 1 – натощак, 4 базальных и 4 – после стимуляции) доставляются в лабораторию сразу после зондирования, их желательно исследовать без промедления.

В случае противопоказаний к зондированию желудка применяют беззондовые исследования – определение кислотности желудочного сока при помощи препарата «Ацидотест». Для этого исследования собирают мочу в 8–9 ч утра, натощак, не менее чем через 8 ч после последнего приема пищи. Накануне и в день исследования запрещается употребление спиртных напитков, любых лекарств и окрашивающих мочу пищевых продуктов.

Больной опорожняет мочевой пузырь, затем принимает 2 таблетки кофеина, спустя 1 ч опорожняет мочевой пузырь. Эта порция мочи собирается и служит контролем. Сразу же после этого пациент проглатывает 3 желтых драже, не разжевывая и запивая их небольшим количеством воды. Через 1,5 ч вновь опорожняет мочевой пузырь в отдельную посуду. Обе порции доставляются в лабораторию.

Исследования выпотных жидкостей

Выпотную жидкость (экссудаты и транссудаты) получают при помощи пункции серозных полостей (плевральной, брюшной, перикарда и др.).

Пункцию производит врач. Полученную жидкость собирают в чистую сухую посуду, в лабораторию тотчас же после пункции направляют все количество полученной жидкости. Для предотвращения свертывания и потери клеточных элементов (со сгустком) к жидкости добавляют лимоннокислый натрий (1 г на 1 л жидкости), тщательно перемешивая стеклянной палочкой.

Исследование секрета предстательной железы Секрет предстательной железы получают после энергичного массажа предстательной железы, проводимого врачом в течение 3–4 мин. Секрет собирают в чистую сухую пробирку. Если в результате проведения массажа выделений не получено, то после массажа собирают первую порцию мочи и в ней изучают структуры, характеризующие состояние предстательной железы.

Исследование семенной жидкости

Получение эякулята происходит с помощью вибрационного устройства в специальном кабинете. Оптимальный результат дает исследование секрета, полученного после 3-4-дневного полового воздержания. Собирают материал в чистый стеклянный градуированный сосуд, исследуют либо сразу после получения, либо доставляют в лабораторию в охлажденном состоянии как можно скорее (в пределах 1 ч) после семяизвержения.

Недопустимо собирать и доставлять эякулят в лабораторию в презервативе, так как в этом случае происходит быстрое разрушение сперматозоидов.

Исследование биоматериала на урогенитальный хламидиоз и микоплазмоз

Перед взятием материала из уретры рекомендуется задержка мочеиспускания до 1,5–2 ч и более; при наличии обильных гнойных выделений соскоб надо брать либо сразу, либо через 15–20 мин после мочеиспускания. При отсутствии выделений следует провести массаж уретры с помощью одноразового зонда для взятия материала.

В уретру мужчин зонд вводят на глубину 3–4 см (область ладьевидной ямки), в уретру женщин – на 1–1,5 см (после предварительного ее массажа о лонное сочленение) – и делают несколько вращательных движений его кончиком. У детей зонд в уретру не вводят, материал берут с ее наружного отверстия.

При взятии материала у женщин из цервикального канала предварительно удаляют слизистую пробку стерильным ватным тампоном и обрабатывают шейку матки стерильным физраствором. Зонд вводят в канал шейки матки на глубину 0,5–1,5 см. При наличии эрозий шейки матки их обрабатывают стерильным физраствором и материал берут зондом с границы здоровой и измененной ткани. При извлечении зонда необходимо полностью исключить его касание стенок влагалища. После этого материал помещают на предметное стекло в виде мазка-отпечатка, многократно касаясь его поверхности кончиком зонда с биоматериалом.

Исследование биоматериала на урогенитальный трихомониаз

Материалом для исследования служит отделяемое из уретры, цервикального канала, влагалища, секрет предстательной железы и выделения из других возможных очагов заболевания.

Материал для исследований у женщин следует брать перед менструацией или через 1–2 дня после ее окончания.

Перед исследованием пациент не должен мочиться в течение 3–4 ч. Женщины, кроме того, в день явки на обследование не должны спринцеваться и проводить туалет половых путей. Перед обследованием следует воздерживаться от половых сношений. За 5–7 дней до обследования необходимо прекратить прием медикаментов и лечебные процедуры, проводимые при лечении урогенитальных заболеваний, так как они могут воздействовать на влагалищные трихомонады, деформируя и обездвиживая их. Нецелесообразно брать на исследование свободно стекающую каплю уретральных выделений, так как трихомонады в ней деформированы. При наличии обильных выделений проводят туалет уретры стерильным теплым физраствором.

У мужчин в уретру вводят стерильный зонд на 4–5 см и осторожно, легким поскабливанием со слизистой уретры берут ее отделяемое для исследования.

У женщин при отсутствии явлений острого уретрита и обильных выделений перед взятием материала из уретры проводят ее массаж в течение 0,5–1 мин о лонное сочленение. Соскоб берут со слизистой уретры и с заднего свода влагалища. Перед взятием материала из канала шейки матки влагалищная ее часть обтирается стерильным тампоном, смоченным физраствором, убирается слизистая пробка. Стерильный зонд вводят в цервикальный канал осторожно на глубину не более 1–1,5 см.

При хроническом и вялотекущем мочеполовом трихомониазе лабораторные исследования целесообразно проводить после провокации. Рекомендуется применять один из следующих методов провокации:

1) биологическая: однократно вводят внутримышечно гоновакцину в количестве 500 млн микробных тел взрослым и 100–200 млн микробных тел детям старше 3 лет. Детям до 3 лет гоновакцину не вводят;

2) термическая: женщинам проводят диатермию в течение 3 дней по 30, 40, 50 мин или индуктотермию в течение 3 дней по 10, 15, 20 мин. Через один час после каждого прогревания производят взятие отделяемого из уретры, цервикального канала и прямой кишки;

3) механическая: мужчинам проводят массаж уретры на буже в течение 10 мин, а женщинам накладывают металлический колпачок на шейку матки на 4 ч, после чего проводят взятие материала и исследуют его;

4) алиментарная: за 24 ч до лабораторных исследований употребляют соленую, острую пищу, а также алкоголь.

Провокации не проводят женщинам во время менструации. Взятие материала производят как после провокации, так и через 24–48–72 ч.

Материал для исследования берут специальными одноразовыми зондами, либо стерильной ложкой Фолькмана, либо ушным зондом с затупленным концом.

Исследование отделяемого из урогенитального тракта на гонорею

Материалом для исследования служит у мужчин отделяемое уретры и прямой кишки, у женщин – отделяемое уретры, шейки матки, прямой кишки. У детей исследуют содержимое влагалища и прямой кишки. Взятие материала должен производить лечащий врач. Отделяемое уретры у мужчин захватывают краем предметного стекла и равномерно размазывают на двух предметных стеклах либо берут стерильной петлей или специальным зондом из глубины уретры, предварительно очистив ее отверстие тампоном, смоченным стерильным физраствором.

У женщин материал для исследования из уретры, бартолиниевых желез и парауретральных ходов после обтирания их ватным тампоном, смоченным физраствором, берут влагалищным пинцетом или специальным зондом. Из прямой кишки материал берут тупой ложечкой.

При хронической и торпидной гонорее перед исследованием для повышения вероятности выявления возбудителя проводят провокацию одним из способов, приведенных выше (как при диагностике трихомониаза).

Нельзя брать материал ватным тампоном. Нельзя брать материал во время менструации.

Гематологические исследования

Для исследования гематологических показаний используется капиллярная и венозная кровь. Взятие капиллярной крови осуществляется лаборантом, венозной – медицинской сестрой.

Взятие крови осуществляется натощак в утренние часы, в случае необходимости – в любое время суток.

Взятие крови необходимо проводить в одноразовых резиновых перчатках: в тех случаях, когда это невозможно, перед каждым взятием перчатки следует обрабатывать 70 %-ным спиртом.

При взятии венозной крови вены пережимаются манжетой на время не более 30 с (проверить, чтобы пережатие не коснулось артерий – пульс должен прощупываться). Место пережатия должно быть выше места прокола на 8-10 см.

У больных с цианозом следует использовать иглы большего диаметра (вязкость крови выше). При внутривенных переливаниях крови или лекарственных веществ взятие крови осуществляется как можно дальше от места переливания.

Пробирки с ЭДТА должны быть чистыми, плотно закрываться. Объем крови, необходимый для исследования, маркируется на пробирке в соответствии с количеством антикоагулянта, помещенного в пробирку. Оптимальная концентрация солей ЭДТА в сухом виде – 1,5 мг на 1 мл крови; в растворе: 1 мкл 15 %-ного раствора К2 ЭДТА или К3 ЭДТА на 1 мл крови, или 10 мкл 7,5 %-ного раствора Na2 ЭДТА на 1 мл крови. При взятии крови пробирка заполняется ею наполовину, затем содержимое хорошо и быстро перемешивают (не встряхивая), далее заполняют кровью до отметки. Набирая кровь, пробирку необходимо вращать. Не трясти! Непосредственно перед исследованием кровь перемешивается легким покачиванием в течение 2 мин.

Капиллярную кровь у взрослых получают из ладонной поверхности рук, мочки уха, у детей – из боковой поверхности пятки или подошвенной поверхности большого пальца ноги или мочки уха. Глубина прокола – 2–3 мм. Кожа прокалывается скарификатором. Первая капля крови удаляется сухой стерильной ватой, так как содержит кусочки поврежденной ткани. Вторая капля используется для исследования. Кровь не должна выдавливаться.

Кровь набирают в индивидуальные, стерильные, предварительно обработанные трилоном Б капилляры непосредственно с кожи и выдувают в стерильные пробирки.

Правильно собранная кровь должна быть доставлена в лабораторию не позднее 60 мин после ее взятия (табл. 13).

Осмотическая резистентность эритроцитов определяется в венозной крови с гепарином. В пробирку с 2 каплями гепарина берут кровь из вены в количестве 1,5 мл и тщательно перемешивают покачиванием. Свежая кровь с антикоагулянтом сохраняется при 15–20 °C в течение 2 ч.

Таблица 13. Условия хранения материала

Биохимические исследования

Взятие материала для биохимических исследований должно проводиться натощак. Последний прием пищи должен быть за 12 ч до взятия, что особенно важно для липидов, глюкозы, мочевины, мочевой кислоты. Исключением из этого правила являются исследования, которые проводятся при неотложных состояниях в любое время, но с учетом этого фактора.

Время взятия – с 7 до 9 ч утра при плановых исследованиях, в любое время – для срочных случаев диагностики.

Взятие биожидкости осуществляется до проведения диагностических или лечебных процедур: операций, инфузий, переливаний крови, растворов, пункций, инъекций, приема лекарств, пальпаций, массажа, эндоскопий, ЭКГ, рентгена.

Сдавливание вен при наложении жгута при взятии крови должно быть минимальным и не превышать 1 мин.

При динамическом наблюдении за пациентом взятие материала нужно проводить в идентичном положении тела примерно в одно и то же время дня.

Использование венозной крови более предпочтительно, чем капиллярной, так как она лучше отражает состояние организма.

Существуют 3 возможности получения венозной крови, когда после венепункции:

1) кровь самостоятельно стекает в пробирку;

2) кровь аспирируется шприцем;

3) кровь забирается с помощью вакуумных пробирок.

Для биохимических исследований венозную кровь получают без аспирации шприцем из-за опасности возникновения гемолиза. Она применяется только в случае «трудных вен».

В зависимости от того, какой материал необходимо получить (сыворотку или плазму), кровь, если нет специальных устройств для взятия, собирают в чистые сухие центрифужные пробирки без добавок (для получения сыворотки) либо с добавлением антикоагулянтов (для получения плазмы). При взятии венозной крови для определения глюкозы в пробирки добавляют ингибиторы гликозида (табл. 14).

Таблица 14. Ингибиторы гликозида

В случае проведения вливаний кровь следует взять до вливания. Если это невозможно, то взятие проводится из вен другой руки; если и это невозможно, то из той вены, в которую проводится вливание, но ниже места вливания.

При взятии крови после вливания оно должно проводиться не ранее чем через 1 ч для растворов и через 8 ч – для жировых эмульсий.

При взятии крови через катетер канюлю промывают физраствором объемом, соразмерным с объемом катетера; первые 5 мл крови удаляют.

Капиллярная кровь для биохимических исследований используется в тех случаях, когда для определения требуется малый объем крови, в педиатрии; у взрослых капиллярная кровь чаще всего используется для определения глюкозы или лактата.

Кровь должна вытекать свободно. Массирование пальца для стимуляции тока крови, сильное сжатие и выдавливание крови должны быть исключены.

Кровь при свободном стекании собирается в коллекторную микропробирку для последующего получения сыворотки.

В направлении на анализ при взятии биожидкостей необходимо указать:

1) отделение;

2) фамилию врача, затребовавшего анализ;

3) данные пациента (Ф.И.О., возраст, пол, стационарный или амбулаторный больной, номер истории болезни, предполагаемый диагноз);

4) дату и время взятия крови или мочи;

5) цель исследования.

Направление на анализ подписывается врачом.

Полученная биожидкость должна быть доставлена в лабораторию как можно быстрее (табл. 15). Пробирки не следует заполнять до краев. Пробирки должны быть закрыты крышками. Цельную кровь, полученную без антикоагулянтов, не следует помещать в холодильник до доставки в лабораторию во избежание гемолиза.

Центрифугирование производится не позднее чем через 1 ч после взятия биожидкости.

Приготовление сыворотки и плазмы выполняет лаборант.

Сыворотку получают из спонтанно свернувшейся цельной крови. Венозная кровь, полученная без антикоагулянтов в центрифужную стеклянную пробирку, отстаивается в ней при комнатной температуре (15–25 °C) 30 мин до полного образования сгустка или помещается в термостат при температуре 37 °C на 15 мин. Затем стеклянной палочкой осторожно проводят по внутренним стенкам пробирки по окружности в верхнем слое крови для отделения сгустка от стенок. Сыворотку сливают в другую центрифужную пробирку и центрифугируют либо центрифугируют в тех же первичных пробирках при 1,2 оборота в минуту в течение 10 + 5 мин.

В случае использования микропробирок и центрифуги для них центрифугирование проводят при 6-15 тыс. оборотов в течение 1,5 мин. После центрифугирования сыворотку сливают во вторичные пробирки.

Таблица 15. Требование по времени выполнения некоторых преаналитических этапов для биохимических исследований

Венозную кровь, полученную с гепарином (0,75 мг/мл), немедленно после взятия перемешивают переворачиванием пробирок с кровью, закрытых крышками, не менее 5 раз. Если плазму нужно получить из капиллярной крови, собранной в микропробирки с ЭДТА (1 мг/мл), то после взятия крови содержимое пробирки перемешивают осторожным переворачиванием не менее 10 раз. Смешивание можно проводить и качательными движениями. Перемешивание должно осуществляться без встряхивания и пенообразования.

Пробирки с кровью центрифугируют при 1000–1500 оборотах в течение 10–15 мин. Плазму немедленно сливают во вторичные центрифужные пробирки.

Доставка крови в клинико-диагностическую лабораторию для определения электролитов, газов крови и системы гемостаза

Правила подготовки обследуемых, взятие и условия хранения и доставки материала для проведения исследований в КДЛ

Исследование кислотно-основного равновесия и газов крови

В качестве биоматериала для определения кислотно-основного равновесия и газов крови предпочтительны артериальная и артериализированная капиллярная кровь. Материал должен быть взят в анаэробных условиях для исключения газообмена с окружающим воздухом. В шприце или капилляре с кровью не должно быть пузырьков воздуха.

Взятие производится из лучевой, локтевой, бедренной и других артерий шприцем или через катетер, находящийся в артерии; артериализированной капиллярной крови – из мочки уха или пятки в капилляры. Взятие артериальной крови из артерии осуществляет врач, артериализированной капиллярной крови – медсестра.

Антикоагулянт используется в жидкой или сухой форме. Жидкий гепарин легко смешивается с кровью, но его использование в шприцах может приводить к ошибкам, связанным с разведением крови. Сухой гепарин несколько медленнее смешивается с кровью, чем жидкий. У лиофилизированного гепарина этого недостатка нет. В случаях одновременного определения газов крови и электролитов в цельной крови рекомендуется использовать забуференный раствор гепарината лития с конечной концентрацией, соответствующей 8—

МЕ/мл крови для стеклянных и 4–6 МЕ/мл для пластиковых сосудов.

Взятие крови можно производить и в стеклянные, и в пластиковые шприцы (но в пластиковых исследование должно быть проведено в течение 5 мин).

В стерильный стеклянный шприц на 5-10 мл с помощью отдельной иглы набирают 100 мкл стерильного раствора гепарината лития с активностью 12–30 МЕ/мл, при этом внутренние стенки шприца полностью смачиваются гепарином при оттягивании поршня, насаживают на шприц иглу, направляют шприц с иглой вверх и выпускают раствор гепарина.

В асептических условиях пунктируют лучевую артерию. После взятия крови одновременно вытягивают иглу и шприц. Шприц закрывают пробкой и содержимое его перемешивают между ладонями. Если исследование не может быть выполнено в течение 5 мин, закупоренный шприц с кровью помещают в стакан с водой и с кусочками льда не более чем на 1 ч для стеклянного шприца и на 30 мин – для пластмассового. До проведения измерения после ледяной бани шприцы с кровью выдерживают при комнатной температуре в течение 10 мин. Перед измерением кровь перемешивают переворачиванием шприца 10 раз и горизонтальным вращением в течение 10 с.

При взятии крови через артериальный катетер первую порцию крови, равную 3 объемам системы катетера до места взятия крови, удаляют.

Артериализированную капиллярную кровь получают из мочки уха. Мочка уха смазывается со всех сторон финалгоновой мазью. Через 10 мин мазь стирают салфеткой, мочка уха промывается 70 %-ным спиртом, вытирается насухо стерильной салфеткой. Стерильным скарификатором, конец которого смочен стерильным гепарином, делают прокол глубиной 3–5 мм на нижней внешней поверхности края мочки уха. Каплю крови удаляют, на рану наносят 1 каплю раствора гепарината лития. Следующие 3 капли крови не используются и стираются. Затем в образующуюся следующую каплю крови вводят первый капилляр, избегая попадания пузырьков воздуха. Мочку уха нельзя массировать и сдавливать.

Кровь должна течь свободно в капилляр, ее не собирают с кожи. После взятия крови один конец капилляра закрывается крышкой, в капилляр помещается металлический штифт («блошка»). Капилляр закрывают крышкой или замазывают замазкой с другого конца. По капилляру из конца в конец 5 раз проводят магнитом для перемешивания крови. Как правило, кровь берут в 2 капилляра, объем крови на исследование составляет 0,15 мл.

Если анализ не выполняется тотчас после взятия крови, загерметизированные стеклянные капилляры с кровью немедленно помещают в сосуд со льдом не более чем на 1 ч.

При хранении во льду за 10 мин до анализа капилляр с кровью нужно выдержать при комнатной температуре. Перед анализом кровь повторно перемешивают в течение 5-10 с.

Перед введением крови в анализатор металлический штифт удаляют из капилляра.

Исследования системы гемостаза

Взятие венозной крови проводит медсестра, капиллярной крови – лаборант.

Кровь из вены у обследуемого берут утром, путем пункции локтевой вены сухой острой короткой иглой с широким просветом без шприца, желательно – без наложения жгута на руку. При плохих венах допустим кратковременный веностаз лишь во время ввода иглы в вену посредством наложения слабой перетяжки – не более 30 мм. Допустимо производить легкий массаж предплечья по направлению от кисти к локтевому сгибу. Первые 5–6 капель крови выпускают на ватный тампон, так как они могут содержать тканевой тромбопластин.

Кровь в пробирки набирают свободным током, перемешивая ее с антикоагулянтом покачиванием или легким встряхиванием, не допуская образования воздушных пузырьков. До центрифугирования пробирки ставятся в ледяную баню (кружка со льдом и водой). Интервал времени между забором крови и началом исследования существенно сказывается на многих параметрах коагулограммы (табл. 17).

Поэтому в результатах анализа следует отмечать время взятия крови и время проведения исследования, чтобы при наблюдении в динамике интервал времени был одинаков и результаты сопоставимы.

Пробирки должны быть стеклянными силиконированными, либо пластиковыми и мерными, либо иметь метку, до которой должна быть набрана кровь, чтобы было соблюдено правильное соотношение крови и антикоагулянта, равное 9:1, если гематокрит близок к нормальному. При значительных отклонениях гематокрита от нормы нужные объемы крови и антикоагулянта берут в соотношениях, указанных в таблице 16.

Таблица 16. Соотношение крови и антикоагулянта для определения гематокрита

Таблица 17. Время хранения крови для проведения отдельных исследований систем гемостаза

В качестве антикоагулянта рекомендуется использовать 3,8 %-ный раствор цитрата натрия, поскольку в цитратной крови (плазме) лучше сохраняются факторы свертывания крови и тромбоциты.

Раствор оксалата натрия (1,34 %) используется ограниченно, так как оксалаты образуют с кальцием растворимое соединение (в плазме появляется мелкая зернистость), ускоряется агрегация тромбоцитов, ускоряется инактивация V и VIII факторов. Плазму готовят центрифугированием 15–20 мин при 3 тыс. оборотов в минуту.

Некоторые тесты могут быть выполнены из плазмы, полученной из капиллярной крови (ПТВ).

Прокол кожи на пальце проводят глубиной около 4 мм. Первые две капли крови удаляют, последующие используют для исследования. Кровь из ранки выдавливать не рекомендуется, так как при этом увеличивается примесь тканевого тромбопластина. Соотношение крови и цитрата – 9:1.